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BirA生物素蛋白連接酶標準反應試劑盒

更新時間:2019-11-26      點擊次數:7624

BirA生物素蛋白連接酶標準反應試劑盒

 

產品套裝編號:BirA500-30ug

產品內容

規(guī)格包裝

BirA biotin-protein ligase

10uL*1(3mg/ml)

10xBiomixA

1.5mL*1

10xBiomixB

1.5mL*1

BIO-200

1.5mL*1

 

  • 產品概述: 

  BirA生物素蛋白連接酶標準反應試劑盒由AVIDITY公司生產,生物素連接酶(Biotin Protein Ligase)用于催化生物素化反應,將生物素連接到特定的蛋白上。反應原理是通過ATP三磷酸腺苷中間體(生物素5’-腺苷酸)以和靶向的方式將d-生物素共價連接到生物素受體肽/蛋白上。

  強烈建議使用AviTag氨基酸序列,而不是其他生物素化肽序列。BirA酶生物素化AviTag序列天然底物(BCCP)反應速率兩倍,并且比使用的其它肽序列多一個數量級或更多。與肽序列的其他生物素化相比,AviTagTM需要更少的酶量和更短的孵育時間,從而小化與蛋白酶和蛋白質不穩(wěn)定性相關的輔助問題。

來源:重組蛋白(Escherichia coli

純度:

 純度>95%,無可檢測的蛋白酶活性。

應用:

生物素受體蛋白的生物素化。

儲存條件:

干冰運送,解凍后分裝,避免反復凍融。

長期保存置于-80℃,短期內使用置于-20℃,頻繁使用可短時置于4℃。在4℃條件下保存三個月??沙?gt;90%的酶活性。

10×Biotin Ligase Buffer A、B和D-Biotin儲存于-20℃,可反復凍融,,生物素蛋白連接酶BirA,4℃存放一個月,活性保留>80。長期保存-80度,每次解凍,酶活性降低10%。

產品成分

BirA biotin-protein ligase:(3mg/ml)

10×Biotin Ligase Buffer A: 0.5 M Bicine,pH 8.3  

10×Biotin Ligase Buffer B: 100 mM ATP, 100 mM MgOAc, 500 μM D-Biotin

D-Biotin:500 µM D-Biotin

 

反應體系示例(250ul)(底物濃度 :≤40uM))

 

反應物組成

體積(ul)

終濃度

AviTag蛋白多肽底物(10nmol)

199.17

40uM

BirA biotin-protein ligase(3mg/ml)

0.83

0.01mg/ml

10xBiomixA

25

1x

10xBiomixA

25

1x

    (*10 nmol AviTag’d底物需2.5μg BirA, 根據底物濃度按倍數放大本體系)

     注意:有些情況可能有必要濃縮您的底物以滿足40μM標準。

 

相關產品信息

產品組成BirA

小包裝規(guī)格型號BirA500-30ug

小包裝規(guī)格型號

BirA500

大包裝規(guī)格型號

BirA-300ug

BirA biotin-protein ligase

10uL*1(3mg/ml)

20uL*2(1mg/ml)

10uL*10(3mg/ml)

10xBiomixA

1.5mL*1

1.5mL*1

1.5mL*10

10xBiomixB

1.5mL*1

1.5mL*1

1.5mL*10

BIO-200 

1.5mL*1

1.5mL*1

1.5mL*10

 

影響因素

1  AviTag的底物肽(蛋白質)濃度與生物素化效率  

 

為了確保生物素化的效率,建議在終的反應混合物中AviTag的底物盡可能接近40μM,反應混合物中的底物濃度越低, 生物素化完成的時間越長。例如,40μM時在30-40分鐘內*生物素化,但在4μM時,使用同樣的方法需要5個多小時。底物濃度與BirA酶活性的關系如圖A。

    2  反應緩沖體系對BirA酶活性的影響

 

 

氯化鈉(>100 mM)、甘油(>5% W/V)、硫酸銨(>50 mM)等許多常見的緩沖液成分會抑制生物素連接酶的活性。當底物蛋白(多肽)確有必要使用這些試劑時,應盡量降低濃度。底物中可含有Tris(pH 8.0), 宜濃度為10 mM,不超過50 mM。

3 底物濃度與BirA酶的數量關系

    

通常,對于每10 nmol底物(40μM),我們建議2.5μg BiRA 生物素化條件3030 - 40分鐘或室溫下約1小時?;蛘?/span>4過夜,ATP4時水解更慢,但該反應過程可能會因為ATP降解引起的不*生物素化,需額外補充ATP解決。

 

BufferA和BufferB已經針對生物素化反應進行優(yōu)化,底物濃度不超過40µM。如果底物濃度

達40~80µM,則要加入額外的生物素,反應如下:1份10×BiotinLigaseBufferA,1份

10×Biotin Ligase Buffer B,7份酶底物混合物和1份D-Biotin。如果底物濃度超過80 µM,請酌情稀釋底物或與技術人員聯(lián)系獲取幫助。

 

4  BirA酶純度

 BirA酶經過測試,顯示沒有可測量的蛋白酶污染。較長的孵育時間確實會帶來目標蛋白被蛋白酶水解的風險,因此建議使用短的*生物素化目標蛋白的孵育時間。較長的孵育時間溶液中的ATP會隨時間水解,降低可用的生物素化反應的ATP。因此,快速完成反應將有利于實現大生物素化。

 

 FAQ:

Q:如何阻止蛋白酶降解底物?

          A:本產品的生物素連接酶經嚴格質量控制,沒有蛋白酶活性。如果用于生物素化的底物蛋白是未經純化的粗提蛋白,建議加入適量的蛋白酶抑制劑,以防止在生物素化的過程中發(fā)生降解。

 Q:如何確定參與反應的適本酶量及反應條件?

          A:由于不同蛋白性質差別很大、生物酶反應存在一定的不確定性,說明書中所述反應條件并不*適用于所有蛋白。建議用戶可以進行預實驗:可先取少量蛋白,分成若干份相同量的底物,加入不同稀釋度的酶,相應量的Buffer A、 B, 30℃ 1 h (或其它時間、溫度條件)反應,以SDS-PAGE Loading Buffer終止反應后,電泳并轉移至NC膜上進行Western Blotting檢測(BSA封閉后直接以市售的HRP-Streptavidin孵育, DAB顯色),比較生物素化情況,選取適條件。由于Streptavidin與Biotin結合力*,因而用于Western Blotting檢測時,只需很少生物素化蛋白即可觀察結果。

 Q:如果我的底物蛋白濃度相當低且不容易濃縮,進行生物素化時該怎么辦?

          A:在進行相同底物量的酶促反應時加入更多的酶并適當延長反應時間。但有一個問題不容忽視,酶是蛋白質,在酶量增加的時候,引入體系中的蛋白量亦增加了,如果后續(xù)的實驗不容許出現很大量雜蛋白,那么延長反應時間將是僅有的選擇。

Q:是否有陽性對照可以參考?

  A:有陽性對照(BIS-300陽性對照底物試劑盒

   BIS-300試劑盒包含*生物素化的MBP-AviTag™融合蛋白標準品和未生物素化的MBP-AviTag™融合蛋白,可用作BirA生物   素連接酶作用下蛋白生物素化程度的比較,用于SDS-PAGE凝膠分析或蛋白質印跡分析。

 

 

 

 

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